使用UPC2/MS/MS對蛋白沉淀血漿中的極性化合物直接進樣
Jennifer L. Simeone and Paul D. Rainville
目的
對蛋白沉淀血漿中的強極性化合物直接進樣分離，以進行生物分析。
背景
大多數生物分析方法都采用蛋白質沉淀(PPT)提取法，這是因為該技術簡單、快速且成本較低。典型的PPT使用3:1的有機溶劑與生物樣品，可得到大約75%的有機提取物。傳統上，通常會采用反相液相色譜(RPLC)分析樣品。對于強極性化合物而言，由于強溶劑作用產生的色譜峰形較差，最為明顯的是出現峰前伸和/或譜峰分叉，因此不能直接將高濃度有機提取物注入RPLC系統。因此，在向色譜系統進樣之前需要進行額外的樣品處理，包括蒸發和復溶或用水稀釋。
通過從RPLC到UPC2改變MS入口技術，無需蒸發和復溶等額外樣品制備步驟，便可以直接進樣分離高度有機樣品中的極性化合物。
圖1. 在反相模式下運行的UPLC®中，咖啡因PPT提取物通過(a)1 μL進樣、(b)3μL進樣獲得的示例色譜圖，以及在ACQUITY UPC2系統中，相同咖啡因PPT提取物的(c)7μL進樣示例色譜圖。
解決方案
UltraPerformance Convergence Chromatography?(UPC2®)使用超臨界二氧化碳作為主要流動相，其保留機制與RPLC不同，可直接進樣高度有機提取物。在本示例中，通過PPT提取法使用乙腈以3:1的比率從大鼠血漿中提取了四種極性較強的化合物，直接進樣至ACQUITY UPC2?系統中，并使用傳統RPLC系統作為對比。UPC2分析在ACQUITY UPC2 BEH色譜柱上進行，采用經氫氧化銨改性的甲醇作為共溶劑(流動相B)。RPLC分析在配備ACQUITY UPLC BEH C18色譜柱的ACQUITY UPLC®系統上進行，采用水和經氫氧化銨改性的乙腈作為流動相。
圖1將含咖啡因的PPT提取物在ACQUITY UPLC系統中的1μL直接進樣和3 μL直接進樣與在ACQUITYUPC2系統中的7μL進樣進行了對比。RPLC中的1μL進樣顯示出良好的峰形，但在3μL進樣體積下峰形發生變形，可以觀察到前伸峰和譜峰分叉。而采用UPC2進行的7μL進樣依然表現出良好的峰形。以相同方式測試的其它極性分子也觀察到類似的結果(表1)。表1還顯示了使用RPLC和UPC2時，在PPT提取物中測試的所有分析物的最大進樣體積。
這些數據明確證實了使用ACQUITY UPC2系統分析高度有機提取物中極性化合物的優勢，并且不必像RPLC系統那樣在進樣前需要進行額外的樣品制備，從而簡化了工作流程。
總結
通過從標準RPLC到UPC2改變MS入口技術，無需蒸發和復溶等額外樣品制備步驟，便可以直接在ACQUITY UPC2系統中注入溶于高度有機樣品中的極性化合物。為生物分析實驗室增添UPC2可以簡化高度有機樣品制劑中極性化合物的分析。
