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          FluorPen手持式葉綠素熒光儀

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          FluorPen FP110
          高教
          其他
          詳細說明

          FluorPen手持式葉綠素熒光儀

          FluorPen手持式葉綠素熒光儀

            FluorPenFP110手持式葉綠素熒光儀用于實驗室、溫室和野外快速測量植物葉綠素熒光參數,具有便攜性強、精確度高、性價比高等特點;雙鍵操作,具圖形顯示屏,內置鋰電和數據存儲,廣泛應用于研究植物的光合作用、脅迫監測、除草劑檢測或突變體篩選,還可用于生態毒理的生物檢測,如通過不同植物對土壤或水質污染的葉綠素熒光響應,找出敏感植物作為生物傳感器用于生物檢測。FP110配備多種葉夾型號,用于不同的樣品與研究。

            應用領域

            適用于光合作用研究和教學,植物及分子生物學研究,農業、林業,生物技術領域等。研究內容涉及光合活性、脅迫響應、農藥藥效測試、突變篩選等。

            · 植物光合特性研究

            · 光合突變體篩選與表型研究

            · 生物和非生物脅迫的檢測

            · 植物抗脅迫能力或者易感性研究

            · 農業和林業育種、病害檢測、長勢與產量評估

            · 除草劑檢測

            · 教學

            功能特點:

            § 結構緊湊、便攜性強,LED光源、檢測器、控制單元集成于僅手機大小的儀器內,重量僅188g

            § 功能強大,是葉綠素熒光技術的高端結晶產品,具備了大型熒光儀的所有功能,可以測量所有葉綠素熒光參數

            § 內置了所有通用葉綠素熒光分析實驗程序,包括3套熒光淬滅分析程序、3套光響應曲線程序、OJIP快速熒光動力學曲線等

            § 高時間分辨率,可達10萬次每秒,自動繪出OJIP曲線并給出26個OJIP–test參數

          FluorPen手持式葉綠素熒光儀

            § FluorPen專業軟件功能強大,可下載、展示葉綠素熒光參數圖表,也可以通過軟件直接控制儀器進行測量

            § 具備無人值守自動監測功能

            § 內置藍牙與USB雙通訊模塊,GPS模塊,輸出帶時間戳和地理位置的葉綠素熒光參數圖表

            § 配備多種葉夾型號:固定葉夾式(適于實驗室內暗適應或夜間快速測量)、分離葉夾式(適用于野外暗適應測量)、探頭式(透明光纖探頭,具備葉片固定裝置,用于非接觸性測量監測或光適應條件下的葉綠素熒光監測)、用戶定制式等

            § 可選配野外自動監測式熒光儀,防水防塵設計

            測量程序與功能

            · Ft:瞬時葉綠素熒光,暗適應完成后Ft=F0

            · QY:量子產額,表示光系統II 的效率,等于Fv/Fm(暗適應狀態)或ΦPSII(光適應狀態)。

            · OJIP:快速熒光動力學曲線,用于研究植物暗適應后的快速熒光動態變化

            · NPQ:熒光淬滅動力學曲線,用于研究植物從暗適應到光適應狀態的熒光淬滅變化過程。

            · LC:光響應曲線,用于研究植物對不同光強的熒光淬滅反應。

            · PAR:光合有效輻射,測量環境中植物生長可以利用的400-700nm實際光強(限PAR型號)。

            技術參數

            · 測量參數包括F0、Ft、Fm、Fm’、QY、QY_Ln、QY_Dn、NPQ、Qp、Rfd、PAR(限PAR型號)、Area、Mo、Sm、PI、ABS/RC等50多個葉綠素熒光參數,及3種給光程序的光響應曲線、3種熒光淬滅曲線、OJIP曲線等

            · OJIP–test時間分辨率為10μs(每秒10萬次),給出OJIP曲線和26個參數,包括F0、Fj、Fi、Fm、Fv、Vj、Vi、Fm/F0、Fv/F0、Fv/Fm、Mo、Area、Fix Area、Sm、Ss、N、Phi_Po、Psi_o、Phi_Eo、Phi–Do、Phi_Pav、PI_Abs、ABS/RC、TRo/RC、ETo/RC、DIo/RC等

            · 測量程序:Ft、QY、OJIP、NPQ1、NPQ2、NPQ3、LC1、LC2、LC3、PAR(限PAR型號)、Multi無人值守自動監測

            · 葉夾類型:FP110/S固定葉夾式、FP110/D分離葉夾式、FP110/P探頭式、FP110/X用戶定制式

          FluorPen手持式葉綠素熒光儀

            · PAR傳感器(限PAR型號):80o入射角余弦校正,讀數單位μmol(photons)/m2.s,可顯示讀數,檢測范圍400-700 nm

            · 測量光:每測量脈沖0.09μmol(photons)/m2.s,調

            · 光化學光:10-1000μmol(photons)/m2.s可調

            · 飽和光:3000μmol(photons)/m2.s,可調

            · 光源:標準配置藍光470nm,可根據需求配備不同波長的LED光源

            · 檢測器:PIN光電二極管,667–750nm濾波器

            · 尺寸大?。撼銛y,手機大小,134×65×33mm,重量僅188g

            · 存貯:容量16Mb,可存儲149000數據點

            · 顯示與操作:圖形化顯示,雙鍵操作,待機8分鐘自動關閉

            · 供電:可充電鋰電池,USB充電,連續工作48小時,低電報警

            · 工作條件:0–55℃,0–95%相對濕度(無凝結水)

            · 存貯條件:-10–60℃,0–95%相對濕度(無凝結水)

            · 通訊方式:藍牙+USB雙通訊模式

            · GPS模塊:內置

            · 軟件:FluorPen1.1專用軟件,用于數據下載、分析和圖表顯示,輸出Excel數據文件及熒光動力學曲線圖,適用于Windows 7及更高操作系統

            操作軟件與實驗結果

          FluorPen手持式葉綠素熒光儀

            產地:捷克

            應用案例:

          FluorPen手持式葉綠素熒光儀

            2017年4月,美國航空航天局(NASA)新一代先進植物培養器(Advanced Plant Habitat,APH)搭載聯盟號MS-04貨運飛船抵達國際空間站。宇航員使用FluorPen手持儀葉綠素熒光儀在其中開展植物生理學及太空食物種植(growth of fresh food in space)的研究。

            參考文獻

            1. F Dang, et al.2019. Discerning the Sources of Silver Nanoparticle in a Terrestrial Food Chain by Stable Isotope Tracer Technique. Environmental Science & Technology 53(7): 3802-3810

            2. N Moghimi, et al.2019. New candidate loci and marker genes on chromosome 7 for improved chilling tolerance in sorghum. Journal of Experimental Botany70(12):3357–3371

            3. M Rafique, et al.2019. Potential impact of biochar types and microbial inoculants on growth of onion plant in differently textured and phosphorus limited soils. Journal of Environmental Management247:672-680

            4. P Soudek, et al.2019. Thorium as an environment stressor for growth of Nicotiana glutinosaplants. Environmental and Experimental Botany164:84-100

            5. JA Pérez-Romero, et al.2019. Investigating the physiological mechanisms underlying Salicornia ramosissimaresponse to atmospheric CO2enrichment under coexistence of prolonged soil flooding and saline excess. Plant Physiology and Biochemistry135:149-159

            6. D Shao, et al.2019. Physiological and biochemical responses of the salt-marsh plant Spartina alterniflorato long-term wave exposure. Annals of Botany, DOI: 10.1093/aob/mcz067

            7. C Cirillo, et al.2019. Biochemical, Physiological and Anatomical Mechanisms of Adaptation of Callistemon citrinusand Viburnum lucidumto NaCl and CaCl2Salinization. Front. Plant Sci. 10:742

            8. T Savchenko, et al.2019. Waterlogging tolerance rendered by oxylipin-mediated metabolic reprogramming in Arabidopsis. Journal of Experimental Botany70(10): 2919–2932

            9. M Liu, et al.2019. Strong turbulence benefits toxic and colonial cyanobacteria in water: A potential way of climate change impact on the expansion of Harmful Algal Blooms. Science of The Total Environment670:613-622

            10. PK Tiwari, et al.2019. Liquid assisted pulsed laser ablation synthesized copper oxide nanoparticles (CuO-NPs) and their differential impact on rice seedlings. Ecotoxicology and Environmental Safety176:321-329

            11. JA Pérez-Romero, et al.2018. Atmospheric CO2enrichment effect on the Cu-tolerance of the C4cordgrass Spartina densiflora. Journal of Plant Physiology220:155-166

            12. SK Yadav, et al.2018. Physiological and Biochemical Basis of Extended and Sudden Heat Stress Tolerance in Maize. Proceedings of the National Academy of Sciences 88(1):249-263

            13. D Balfagón, et al.2018. Involvement of ascorbate peroxidase and heat shock proteins on citrus tolerance to combined conditions of drought and high temperatures. Plant Physiology and Biochemistry127:194-199

            14. JI Vílchez, et al.2018. Protection of Pepper Plants from Drought by Microbacteriumsp. 3J1 by Modulation of the Plant's Glutamine and α-ketoglutarate Content: A Comparative Metabolomics Approach. Front. Microbiol. 9:284

            15. MC Sorrentino, et al.2018. Performance of three cardoon cultivars in an industrial heavy metal-contaminated soil: Effects on morphology, cytology and photosynthesis. Journal of Hazardous Materials351:131-137

            16. E Niewiadomska, et al.2018. Lack of tocopherols influences the PSII antenna and the functioning of photosystems under low light. Journal of Plant Physiology223:57-64

            17. S Singh, et al.2018. Cadmium toxicity and its amelioration by kinetin in tomato seedlings vis-à-vis ascorbate-glutathione cycle. Journal of Photochemistry and Photobiology B: Biology178:76-84

            18. EL Fry, et al.2018. Drought neutralises plant–soil feedback of two mesic grassland forbs. Oecologia186(4):1113–-125

            附:OJIP參數及計算公式

            Bckg = background

            Fo: = F50μs; fluorescence intensity at 50 μs

            Fj: = fluorescence intensity at j-step (at 2 ms)

            Fi: = fluorescence intensity at i-step (at 60 ms)

            Fm: = maximal fluorescence intensity

            Fv: = Fm - Fo (maximal variable fluorescence)

            Vj = (Fj - Fo) / (Fm - Fo)

            Fm / Fo = Fm / Fo

            Fv / Fo = Fv / Fo

            Fv / Fm = Fv / Fm

            Mo = TRo / RC - ETo / RC

            Area = area between fluorescence curve and Fm

            Sm = area / Fm - Fo (multiple turn-over)

            Ss = the smallest Sm turn-over (single turn-over)

            N = Sm . Mo . (I / Vj) turn-over number QA

            Phi_Po = (I - Fo) / Fm (or Fv / Fm)

            Phi_o = I - Vj

            Phi_Eo = (I - Fo / Fm) . Phi_o

            Phi_Do = 1 - Phi_Po - (Fo / Fm)

            Phi_Pav = Phi_Po - (Sm / tFM); tFM = time to reach Fm (in ms)

            ABS / RC = Mo . (I / Vj) . (I / Phi_Po)

            TRo / RC = Mo . (I / Vj)

            ETo / RC = Mo . (I / Vj) . Phi_o)

            DIo / RC = (ABS / RC) - (TRo / RC)

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