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        1. 教育裝備采購網
          第八屆圖書館論壇 校體購2

          FytoScope光源植物培養箱科研級培養箱

          教育裝備采購網 2015-12-28 11:58 圍觀1942次

            一、FytoScope LED光源植物培養箱與傳統植物培養箱的區別和優點

            植物培養箱是生物實驗室常規儀器之一。以前的研究中,只要求培養箱能夠使種子萌發、基本滿足植物的生長即可。但在真正嚴格的植物生理生態研究中,傳統培養箱是遠遠不能達到要求的。而FytoScope LED光源植物培養箱是由植物生理科學家直接參與設計的,才是真正用于精確科研實驗的植物培養箱。

            1.光源

            眾所周知,光是植物生長中最重要的環境因子之一,它不僅為植物光合作用提供輻射能,還為植物提供信號轉導,調節其發育過程。植物在它的整個生命周期中始終處于一個不斷變化的光環境中,在長期的進化中,植物不僅適應了光環境的變化,而且還能相互影響而改變周圍的光環境。因此,培養箱光源就是決定其品質最重要的部分。

            1)光質

            到達地面的太陽光波長大約從300~2600nm,其中對光合作用的有效波長在400~700nm之間,其中425~490nm的藍光以及610~700nm的紅光對光合作用貢獻率最大,而520~610nm(綠色)的光線被植物吸收的比率很低(閆新房,2009)。

            圖1. FytoScope LED光源的單色光光譜

            LED(1ight—emitting diodes),即發光二極管的一大特點就是可以發射出純度極高的單色光(圖1)。因此從LED誕生之初,紅光和白光LED就被用于植物培養。

            圖2.不同光源光譜圖,上左:太陽光;上中:白熾燈;上右:熒光燈(日光燈);下左:鹵光燈;下中:冷白光LED;下右:暖白光LED

            但在很多研究中,科學家希望盡量模擬自然太陽光來培養植物。由圖2中可以看到白熾燈和熒光燈雖然發出的都是白光,實際上其光譜都與太陽光譜有很大差異。與太陽光譜最為類似的就是鹵光燈和白光LED。但是,鹵光燈由于有相當一部分能量都用于發射植物不能利用的750-2600nm波段近紅外輻射。美國GE公司的資料指出這部分能量占到總輻射能量的76%。同時,近紅外輻射又會有極強的光輻射增溫效應,長時間照射會對培養的植物造成損傷。而LED光源的一大優點就是發熱量極少。這從圖2的光譜圖中也可以看到白光LED的近紅外輻射是極低的。

            圖3.光敏色素與激素的交互作用(Jaillais, 2010)

            光除了給植物提供能量,還會直接通過光敏色素和隱花色素來調節植物的多種生理反應(圖3)。光敏色素有兩個互變異構體——紅光光敏色素(Pr)和遠紅光光敏色素(Pfr)。Pr吸收波長為660 Bin左右的紅光,Pfr吸收波長為730nm左右的遠紅光。光敏色素調節多種不同植物對光的反應,包括光周期,種子萌發、展葉、下胚軸伸長和脫黃化。隱花色素則吸收藍光和紫外光范圍的光波。

            因此FytoScope在白光LED和紅藍LED以外,還配備了遠紅光光源。除了為植物生長提供最佳的光質,同時滿足植物光形態建成的需要。另外,FytoScope可以提供綠光LED與紅藍LED組成三原色光源系統,通過調整三原色的比例,能夠發出可見光譜中任意一種顏色的光,用于不同光質對植物影響的研究。FytoScope也可以定制其他顏色的單色光。

            2)光強

            白熾燈、鹵鎢燈光效為12-24lm/W,熒光燈50-70lm/W,鈉燈90-140lm/W,大部分的耗電變成熱量損耗。而理論上LED發光源光效可達到300lm/W。

            FytoScope LED光源植物培養箱可以在30-50cm的距離上實現最大2000μmol(photons)/m2.s的光強,滿足從藻類、擬南芥到小麥、玉米、水稻等高耐光植物的培養需求,并能夠進行各種高光/低光脅迫實驗。

            3)光源與溫濕度的調控

            傳統光源中,熒光燈不能調控光強,只能通過增加或減少燈管數量來粗略控制光強,并不能進行精確實驗。白熾燈、鹵鎢燈雖然可以調節光強,但是由于光譜、光輻射升溫等原因,并不是很適用于植物培養。

            FytoScope可以分別精確控制每種單色光的光強、光照時間,并可以通過軟件實現動態變化,模擬晝夜周期變化、日升日落等自然界中光環境變化,以及其他各種任意變化。同時溫濕度也可以隨著光強同步變化,模擬晝夜周期中氣溫的變化(圖4)。

            圖4. FytoScope軟件中編制的晝夜周期,并模擬日升日落

            4)LED光源的其他優點

           ?、偈褂秒娫措妷狠^低,供電電壓僅為6—24 V,比使用高壓電源更安全;

           ?、诠澞芨咝?,耗電量僅為白熾燈的八分之一,熒光燈的二分之一;

           ?、劭梢栽跇O短時間內發出脈沖光,響應時間快;

           ?、荏w積小、結構緊湊、穩定性強;

           ?、轃o污染,作為全固體發光體,不含金屬汞、耐沖擊、不易破碎、廢棄物可回收,

            是一種綠色照明產品;

           ?、迚勖L,可達50 000小時以上,是普通照明燈具的幾十倍。

            2.培養氣體成分控制

            傳統培養箱只能給植物提供自然環境中的空氣。但對于很多研究溫室效應或者其他氣體對植物影響的科學家,他們需要精確控制培養植物的氣體組分。FytoScope配備了GMS150高精度氣體混合系統,可控制最多4種生長箱中的氣體濃度。標配版可控制空氣/氮氣和CO2,也可以根據用戶需要配置其他氣體的控制功能。系統中內置高精度質量流量計,調控精度高于±2%,穩定性高于±0.1%。在研究溫室效應時,可以將CO2濃度精確控制到ppm級。

            圖5. 配備GMS150高精度氣體混合系統的FMT150藻類培養與在線監測系統

            3.植物生理生態監測

            傳統培養箱只能對植物進行一般性培養,并不能在培養過程中自動獲得植物生長相關的生理生態監測數據,還需要研究人員將植物取出手動測量。不但耗費人力,而且還會對植物的培養過程造成干擾。

            FytoScope配備了MP100葉綠素熒光自動監測儀。MP100內置有目前國際上熒光研究的幾乎所用測量程序,包括Ft、QY、OJIP、NPQ、光響應曲線??梢杂糜诠夂匣钚匝芯?、自然環境條件下植物光合能力的長期監測、植物脅迫檢測、除草劑測試、人工或野外條件下的植物生長情況監測等。

            研究者可以通過FytoScope設計不同的晝夜周期、光質/光強變化、高溫/低溫脅迫、氣體組分等實驗,再通過MP100實時監測植物熒光生理指標,進而完成一個完整的植物生理實驗。這使得FytoScope單獨完成一個實驗過程,成為真正的科研儀器,而不同于傳統培養箱僅僅是培養實驗材料的工具。

            圖6. FytoScope配備的MP100葉綠素熒光自動監測儀

            二、FytoScope LED光源植物培養箱技術參數

            FytoScope配備有多種尺寸型號,滿足不同用戶的需求。其內部容積如下:

            § FS 130:124L

            § FS 360:290L

            § Reach-In FytoScope:1600L

            § Step-In FytoScope:3400L/4400L

            § Walk-In FytoScope:超大型版,尺寸可定制,可與PlantScreen植物表型成像分析系統組合成為更先進的研究分析系統。

            圖7.上左:FS 130;上中:FS 360;上右:Reach-In FytoScop;下左;Step-In FytoScope;下右:與PlantScreen植物表型成像分析系統組成聯合系統的Walk-In FytoScope

            其他技術參數(以FS130為例)

            § LED光源(兩種標準光模塊,可定制其他光源):

            1.WIR 光源(白+遠紅光 LEDs;冷白光或暖白光),共112顆LED

            冷白光:0-1500μmol(photons)/m2.s

            暖白光:0-500μmol(photons)/m2.s

            最大光強升級(可選):2000μmol(photons)/m2.s(冷白光)1000μmol(photons)/m2.s(暖白光)(距光源30cm處測量)

            2.RGBIR光源(紅光+綠光+藍光+遠紅光LEDs),共336顆LED

            總光強:0-1500μmol(photons)/m2.s,

            紅光627nm:500μmol(photons)/m2.s

            綠光530nm:500μmol(photons)/m2.s

            藍光470nm:500μmol(photons)/m2.s

            總光強升級(可選):2000μmol(photons)/m2.s(距光源30cm處測量)

            § 環境條件自動控制:精準控制光照模式、光照強度、溫度和時間

            § 溫度控制范圍:+15℃至+50℃(最大光照),+7℃至+50℃(無光照)

            § 溫控升級(可選,不可同時選光源升級):+7℃至+55℃(最大光照),可定制更大的溫控范圍

            § 相對濕度調控范圍(可選):40%~80%

            § 葉綠素熒光監測模塊(可選):可自動監測葉綠素熒光參數Ft、QY

            § 高精度氣體混合系統(可選):可控制最多4種生長箱中的氣體濃度,標配版可控制空氣/氮氣和CO2

            § 用戶自定義編程控制(可選):用戶可自定義光強及持續時間,設置多達224種光照的階段性變化,進行晝夜周期模擬

            三、FytoScope LED光源植物培養箱應用案例

            1.植物對氣候變化的響應機制

            Duarte使用FytoScope模擬晝夜變化研究了C3植物Halimione portulacoides和C4植物海岸米草Spartina maritima在不同溶解CO2條件下的生理變化,探討鹽沼植物對氣候變化的響應。一方面FytoScope可以調控溫度、光照及晝夜變化;另一方面FytoScope也能夠精確控制CO2濃度(Duarte,2014)。

            圖8. 不同CO2和光照條件下兩種植物氧氣的生產和消耗

            Duarte使用溶解氧測量儀(RF-O2熒光光纖氧氣測量技術)測量兩種植物在不同CO2和光照條件下的放氧速率(圖8);同時通過FytoScope中的葉綠素熒光監測儀來測量OJIP曲線、Fv、QY、ABS/CS、TR0/CS、ET0/CS等十余項熒光參數來分析對光合系統的影響(圖9)。

            圖9.兩種植物在不同CO2條件下的OJIP動力學曲線

            最后,Duarte認為鹽沼會通過水體的氧化作用與吸收過量CO2的酸化緩沖作用,在氣候變化的補償效應中扮演重要的角色。

            2.重金屬脅迫

            Santos則使用FytoScope來研究Zn在燈心草屬模式種Juncus acutus中的超積累(Santos,2014)。通過設置一系列不同濃度的Zn脅迫梯度來培養J. acutus,測量發芽率、干重等生長指標(圖10)。又用FP100葉綠素熒光測量儀來分析Zn對其光合系統的損傷(圖11)。

            圖10.J. acutus在不同濃度Zn中的發芽情況

            圖11.J. acutus在不同濃度Zn中的OJIP動力學曲線

            Santos最終的結論是表現出了J. acutus對高濃度Zn的高耐受性,同時能夠抵御Zn對葉綠體膜造成的過量氧化物積累的傷害。因此,J. acutus可以用于對陸地和水體的重金屬污染生態修復。

            3.高光脅迫

            Domingues研究了硅藻Phaeodactylum tricornutum對高光照造成的光氧化脅迫的響應機制(Domingues,2012)。發現將低光適應(40μmol(photons)/m2.s)后的硅藻進行高光(1250μmol(photons)/m2.s)照射,會產生非光化學淬滅(NPQ)的快速響應(圖12)。而且高光照對最大量子產額(Fv/Fm)造成了和林可霉素相同的效果,即活性PSII反應中心的顯著減少。

            圖12.P. tricornutumNPQ和Fv/Fm的變化

            Domingues認為P. tricornutum在高光下會將總蛋白更多的分配給光抑制靶蛋白D1,并激活D1修復循環來限制光抑制。

            參考文獻:

            1. 閆新房等,2009,LED光源在植物組織培養中的應用,中國農學通報,12:42-45

            2. Jaillais Y, et. al, 2010, Unraveling the paradoxes of plant hormone signaling integration, Nature Structural & Molecular Biology, 17:642–645

            3. Duarte B, et. al, 2014, Light–dark O2 dynamics in submerged leaves of C3 and C4 halophytes under increased dissolved CO2: clues for saltmarsh response to climate change, AoB PLANTS, doi: 10.1093/aobpla/plu067

            4. Santos D, et. al, 2014, Unveiling Zn hyperaccumulation inJuncus acutus: Implications on the electronic energy fluxes and on oxidative stress with emphasis on non-functional Zn-chlorophylls, Journal of Photochemistry and Photobiology B: Biology, 140:228-239

            5. Domingues N, et. al, 2012, Response of the diatomPhaeodactylum tricornutumto photooxidative stress resulting from high light exposure, PLoS one, 7(6): e38162

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